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細(xì)胞免疫組化不著色的原因及解決方案

更新時(shí)間:2025-11-28 點(diǎn)擊量:121

一、抗原修復(fù)不充分

原因:甲醛固定導(dǎo)致抗原表位交聯(lián)封閉,或修復(fù)液pH值錯(cuò)誤、時(shí)間不足。

解決:

使用pH 6.0檸檬酸鹽緩沖液(多數(shù)抗體適用)。

高壓修復(fù)(121℃, 2~3分鐘)優(yōu)于微波修復(fù)。


二、一抗問題

原因:濃度過低、孵育時(shí)間過短或抗體失效。

解決:

進(jìn)行濃度梯度測試(如1:50~1:400)。

設(shè)立陽性對照驗(yàn)證抗體活性。


三、組織固定不當(dāng)

原因:固定時(shí)間過長(>48小時(shí))或固定液濃度過高。

解決:

推薦10%中性福爾馬林固定6~24小時(shí)。

及時(shí)固定(大標(biāo)本需切開)。


四、操作失誤

原因:組織干燥、切片過厚或試劑覆蓋不全。

解決:

保持切片濕潤,厚度控制在3~4μm。

使用DAKO筆圈畫組織防止液體流失。


五、DAB顯色異常

原因:顯色時(shí)間過長或DAB變質(zhì)。

解決:

現(xiàn)配現(xiàn)用DAB,顯色時(shí)間控制在1~5分鐘。

顯微鏡下監(jiān)控顯色過程。


六、其他因素

內(nèi)源性酶未阻斷:用3% H2O2處理10分鐘(室溫)。

脫鈣組織處理:改用EDTA脫鈣液避免抗原破壞。

若問題持續(xù),建議檢查抗體特異性或重新取樣。

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