關于培養細胞樣品：
1.融解ripa裂解液，混勻。取恰當量的裂解液，在運用前數分鐘內參加pmsf，使pmsf的終濃度為1mm。
2.關于貼壁細胞：去除培養液，用pbs、生理鹽水或無血清培養液洗一遍(假如血清中的蛋白沒有干擾，能夠不洗)。按照6孔板每孔參加150-250微升裂解液的份額參加裂解液。用槍吹打數下，使裂解液和細胞充沛接觸。一般裂解液接觸細胞1-2秒后，細胞就會被裂解。
關于懸浮細胞：離心收集細胞，用手指把細胞用力彈散。按照6孔板每孔細胞參加150-250微升裂解液的份額參加裂解液。再用手指輕彈以充沛裂解細胞。充沛裂解后應沒有明顯的細胞沉積。假如細胞量較多，必需分裝成50-100萬細胞/管，然后再裂解。
3.充沛裂解后，10000-14000g離心3-5分鐘，取上清，即可進行后續的page、western和免疫沉積等操作。
裂解液用量說明：一般6孔板每孔細胞參加150微升裂解液現已足夠，但假如細胞密度十分高能夠恰當加大裂解液的用量到200微升或250微升。
關于安排樣品：
1.把安排剪切成細微的碎片。
2.融解ripa裂解液，混勻。取恰當量的裂解液，在運用前數分鐘內參加pmsf，使pmsf的終濃度為1mm。
3.按照每20毫克安排參加150-250微升裂解液的份額參加裂解液。(假如裂解不充沛能夠恰當增加更多的裂解液，假如需求高濃度的蛋白樣品，能夠恰當減少裂解液的用量。)
4.用玻璃勻漿器勻漿，直至充沛裂解。
5.充沛裂解后，10000-14000g離心3-5分鐘，取上清，即可進行后續的page、western和免疫沉積等操作。
6.假如安排樣品本身十分細微，能夠恰當剪切后直接參加裂解液裂解，通過激烈vortex使樣品裂解充沛。然后同樣離心取上清，用于后續試驗。直接裂解的優點是比較方便，不用運用勻漿器，缺陷是不如運用勻漿器那樣裂解得比較充沛。
注：ripa裂解液的裂解產品中經常會出現一小團通明膠狀物，屬正常現象。該通明膠狀物為含有基因組dna等的復合物。在不檢測和基因組dna結合特別緊密的蛋白的情況下，能夠直接離心取上清用于后續試驗；假如需求檢測和基因組結合特別緊密的蛋白，則能夠通過超聲處理打碎打散該通明膠狀物，隨后離心取上清用于后續試驗。假如檢測一些常見的轉錄因子，例如nf-kappab、p53等時，一般不用進行超聲處理，就能夠檢測到這些轉錄因子。
